在製備感受態細胞,儲存的時候用的甘油的濃度?以及加完甘油後最

2021-03-20 03:09:06 字數 3379 閱讀 8021

1樓:天涯_海角

配製30%的甘油,儲存的時候等體積加入感受態細胞中,甘油終濃度為15%。

大腸桿菌感受態細胞製備為什麼要用cacl2處理細菌

2樓:阿魯巴星人

ca離子沉聚在細胞膜表面會使得細胞膜呈一種液晶的狀態,這種狀態便於在熱激條件下形成縫隙,便於轉化質粒。

在製備感受態細胞,儲存的時候用的甘油的濃度

3樓:匿名使用者

我們通常是配製80%的甘油,然後高壓滅菌備用。用的時候,取一半甘油一半菌液即可,-80儲存,復甦沒有問題。甘油的終濃度是40%。

4樓:天涯_海角

有那麼高嗎,我剛做的,甘油終濃度用的是15%。

5樓:匿名使用者

一般100ml 0.1mcacl2加入4ml甘油

6樓:輝楚達鳥

配製30%的甘油,儲存的時候等體積加入感受態細胞中,甘油終濃度為15%。

感受態細胞的製備時有什麼注意事項

7樓:天寂無痕

1、培養溫度。較低的溫度培養有利於感受態的形成,這樣可以獲得較高的感受態,但太低又不實用,因而產生了 inoue 的高效感受態製備方法,它實際是利用了所有有利於感受態的文獻而得出的一

個非常理想方法。

2、在儲存感受態時,dmso 要比甘油的效果要好,它會使感受態的效率增加。

3、液氮速凍也會使感受態的效率提高,因此推薦用液氮速凍感受態,然後儲存於超低溫冰箱內。

4、凍存的感受態用一次拿一管,不要反覆凍融。化凍之後立即使用,不要冰上放太久。

5、操作時可以輕彈輕甩,儘量避免用移液器吹吸。

8樓:y神級第六人

(1)質粒dna的質量和濃度:

用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的,轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比,但當加入的外源dna的量過多或體積過大時,則會使轉化率下降。一般地,dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。對於以質粒為載體的重組分子而言,分子量大的轉化效率低,實驗證明,大於30kb的重組質粒將很難進行轉化。

此外,重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關,環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍,因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子。

(2)感受態細胞的質量:

所用的cacl2等試劑均需是最高純度的,並用最純淨的水配製,最好分裝儲存於4℃

(3)細胞的生長狀態和密度

最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。不要用已經過多次轉接,及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。

即應用對數期或對數生長前期的細菌,可通過測定培養液的od600控制。對tg1菌株,od600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同)。

密度過高或不足均會使轉化率下降。

(二)感受態細胞轉化中的影響:

整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,並經高壓滅菌處理。所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、dna酶或雜dna所汙染,否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入。整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉化率將會降低。

如何製備大腸桿菌感受態細胞

9樓:匿名使用者

(1)挑取大腸桿菌單菌落,接種於5 ml無抗生素的lb液體培養基中,37℃下振盪培養13h,至對數生長後期。將該菌懸液以1:50 的比例接種於100 ml lb 液體培養基中,37℃振盪培養2-3h至od600=0.

5。(2)在無菌條件下將培養液轉入離心管中,冰上放置10 min,使培養物冷卻至0℃,然後4℃,4000rpm離心10min;

(3)棄去上清,倒置1 min,以便將培養液流盡;

(4)用冰預冷的0.1 mol/l的cacl2溶液10 ml輕輕懸浮細胞,充分混勻,冰上放置30 min後,4℃下4000rpm離心10min;

(5)棄去上清,並倒置1 min,以便最後的痕量培養液流盡;

(6)加入4 ml預冷含15%甘油的0.1 mol/l的cacl2溶液,輕輕懸浮細胞,冰上放置幾分鐘,即成感受態細胞懸液;

(7)感受態細胞100 μl分裝,貯存於-70 ℃儲存備用。

製作大腸桿菌感受態細胞時,最後儲存細胞時用甘油好呢?還是用dmso好呢

10樓:匿名使用者

甘油就可以了,dmso是用來保護細胞這種比較嬌嫩的,大腸桿菌就用便宜一點的好了。

希望能夠幫到你~有問題一起討論解決哦~

11樓:匿名使用者

感受態細胞一般都是用甘油就可以了,放在-80冰箱半年內都有效

12樓:匿名使用者

我建議用甘油,但是還要看你個人了

製備出來的感受態細胞在什麼時候做轉化最佳

13樓:阿魯巴星人

當場做出來的,當時做轉化,轉化效率最高。

儲存在-80冰箱的感受態,儲存40天以後,感受態效率會有明顯下降。

經轉化的感受態細胞,塗完板後,還有剩餘的菌液,為什麼是放在-4度儲存,為什麼不能放在-20度??

14樓:匿名使用者

是4度吧。。放4度是抑制其生長。。若放在-20度,雖然經過轉化後復甦,細胞是有些恢復了活性,但是畢竟還是很脆弱,-20度冷凍細胞,然後再解凍使用的話,很容易使細胞死亡的,加之如果本來細胞的轉化效率就不是很高的話,可能再次塗板的結果是沒有菌落長出。。。

一般,我們做實驗,剩餘對的菌液是不會再用的,一是不靠譜,二是若是塗的板沒長單菌落的話,那麼這個剩餘的菌液也就沒什麼作用了:若是長出了,大可以抽提質粒,下次用時再轉,或者搖菌後用甘油保種,下次用時可選擇劃線,也可以直接搖菌。。。

個人感覺那個剩餘的菌液,不存也罷。。不知道你那邊存起來時為了???

15樓:匿名使用者

為什麼要儲存?都塗上不就完了,如果轉化率較高,不必用離心,吸取200微升塗上就行了,轉化率低的時候離一下心倒掉上清留一兩百微升塗板。一般4度短時間儲存,-20度長期儲存。

菌液反覆凍融會影響菌種活力。如果一兩天內就要用還是放4度好。

做好的感受態細胞在-80度能儲存多久呢?

16樓:春野櫻

一般的細胞-80儲存2-3個月,最後不要超過2個月。

17樓:不流淚的兵

hen nan hui da

手上沾了感受態細胞液,感受態細胞的製備時有什麼注意事項

沒關係的,清洗乾淨就可以了,感受態細胞就是處理過的用來擴增dna的普通細胞,在手上也不會有什麼傷害,不用擔心 感受態細胞的製備時有什麼注意事項 1 培養溫度。較低的溫度培養有利於感受態的形成,這樣可以獲得較高的感受態,但太低又不實用,因而產生了 inoue 的高效感受態製備方法,它實際是利用了所有有...

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