1樓：
主要可能是temed和ap的量的問抄題，你可以參考一下我的配方：
分離膠12.5%（sds），10ml體系
分離緩衝：2.5ml
貯膠：4.167ml
純水：3.233ml
10%sds：0.1ml
10%ap：100微升
temed：5微升
————————————————————————濃縮膠5%，4ml體系
濃縮緩衝：1ml
貯膠：0.6ml
純水：2.35ml
10%ap：45微升
temed：15微升
————————————————————————以上配方經本人親用無數次證明切實有效，大概在一小時左右即可凝固，天冷凝得慢可放置於25度烘箱內幫助加速凝固。
2樓：匿名使用者
分離膠一般40來分鐘凝好，濃縮膠一般要90分鐘 想快一些你可以在旁邊放個電爐提高溫度，或多加適量的催化劑。
sds-聚丙烯醯胺凝膠電泳分離血清蛋白質的實驗中，當分離膠加完之後為什麼需要在上面加一層水？
3樓：匿名使用者
加一層水稱為水封
目的是隔絕空氣使催化反應快速進行，進
而形成凝膠，還可使分離膠上版沿平直。
並且權加水後，保持分離膠表面的平整性，使濃縮膠和分離膠都處於同一水平面上。
甘氨酸是為了解離出甘氨酸根離子，甘氨酸根離子可以穩定的介面，使蛋白聚集在移動介面附近，濃縮在一起。
樣品液煮沸這個問題我個人認為是可以商榷的，因為理論上煮沸可以使sds和蛋白更快更好的結合，以便於sds-page的進行。但是有些蛋白似乎不煮沸直接上樣結果更好。對於非還原loading buffer（即不含巰基乙醇）的樣品，一般是不要煮沸的。
長時間的電泳會使正極變酸，負極變鹼。
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